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March 20, 2025
(H3)
Os tubos de vácuo dependem dePrincípio de Bernoulliegradientes de pressãoO tubo pré- evacuado cria umpressão negativaA taxa de fluxo sanguíneo é de 20 kPa (normalmente 20-30 kPa), que supera a pressão venosa (5-15 mmHg).QsegueEquação de Hagen-Poiseuille:
Q=8nLπΔPr4- Não.
Onde?ΔP= gradiente de pressão,r= raio da agulha,n= viscosidade sanguínea (~3 ‰ 4 mPa·s), eL= comprimento da agulha.
Intuição fundamental: Os medidores de agulha mais pequenos (por exemplo, 21G versus 23G) reduzem or, reduzindo as taxas de fluxo mas minimizando o risco de hemólise.
Vidro: Químicamente inerte, ideal para ensaios de oligoelementos (sem lixiviação).
Plastico (PET): Resistente a rupturas, mais leve, mas pode exigir revestimentos de silicone para reduzir a adesão celular.
Os géis de polímeros (por exemplo, à base de poliéster) têm umadensidadede 1,04 ∼1,08 g/cm3, intermediário entre soro (1,02 g/cm3) e células (1,08 ∼1,10 g/cm3). Durante a centrifugação (1,200 ∼2,000 RCF), o gel migra para formar uma barreira,que impede que o metabolismo celular altere os análytes.
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Aditivo | Mecanismo | Uso de exemplos |
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EDTA | Quelatos Ca2+ → inibe a cascata de coagulação | CBC (conservação da morfologia celular) |
Citrato de sódio | Liga-se ao Ca2+ → impede a conversão de fibrinogénio → fibrina | Estudos de coagulação (PT/APTT) |
Heparina | Ativa a antitrombina III → inibe a trombina | Eletrólitos plasmáticos (K+, Na+) |
Nota técnicaA redução da dose de EDTA é de 1,5 a 2,2 mg/ml de sangue.
Partículas de sílica em tubos vermelhos se activamFator Hageman (FXII)Otimizar a área da superfície (~ 300 m2/g) assegura a formação rápida de coágulos (20-30 min).
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Tubos: Tubos separadores de soro (SST) para detecção de IgG/IgM.
Desafio: Interferência do gel no ELISA → resolvida por ultracentrifugamento (10.000 RCF, 10 minutos).
Dados: Sensibilidade melhorada de 85% → 94% (J. Clin. Microbiologia., 2023).
Biópsias líquidas:
Tubos: Tubos de ADN livres de células (Streck) com fixantes exclusivos.
Física: Estabiliza as nucleases através deQuelatores(EDTA) eReguladores osmóticospara evitar a fragmentação do ADN.
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Rege as dimensões dos tubos, aditivos e rotulagem.
Tolerância de volume: ± 10% para tubos < 10 ml.
Limite de hemólise: hemoglobina livre < 0,5 g/l (espectrofotometria a 540 nm).
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Figura 1: Pressão versus volume de extração de sangue em tubos de vácuo
(Incruto gráfico interativo aqui comparando 21G versus 23G performance agulha)
Figura 2: Eficiência do separador de gel por velocidade de centrifugação
(Diagrama de barras mostrando rendimento de plasma livre de células a 1.000 versus 2.000 RCF)
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A: Para manterforça iónicaPara uma medição precisa do fator de coagulação, o subpreenchimento dilui os fatores → PT/APTT falsamente prolongado.
R: Os plastificantes (por exemplo, ftalatos) em tubos PET podem lixiviar Zn2+ → utilizar tubos certificados sem oligoelementos.
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Hemólise: ruptura de glóbulos vermelhos devido a tensão de cisalhamento ou desequilíbrio osmótico.
Ordem do sorteio: Sequência para evitar a contaminação cruzada (por exemplo, citrato antes de EDTA).
SSTTubo de separação de soro (barreira de gel).
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Problemas: Perda de vácuo variável em regiões de alta altitude (por exemplo, montanhas dos Andes).
Solução: Tubos com rolhas reforçadas (CLSI H21-A5).
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CLSI H3-A6: Procedimentos de recolha de sangue.
Química Clínica(2023): Interferência aditiva na espectrometria de massa.
Orientações da OMS: Armazenamento em tubos a 4 ̊25°C, evitar congelamento.
Sugestão de elementos interativos:
Glossário de dicas: Mover o mouse sobre termos como ?? RCF?? para ver definições.
Quiz: Teste os seus conhecimentos sobre aditivos para tubos!
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